SPRm表面等离子体共振显微镜（免标记检测）
活细胞上免标记生物分子结合过程的检测 
SPRm200是将表面等离子体共振技术和光学显微镜巧妙结合为一的生物传感检测仪。它为免标记研究分子相互作用的领域开辟一个崭新的前沿。专门针对细胞膜蛋白和相关分子免标记检测而设计的SPRm200仪器可帮助您在实时观察细胞结构的同时能够测量药物和靶点在细胞上的结合过程，并且可以在其自然状态下完成对药物和膜蛋白之间相互作用的测量。应而不在需要从细胞中提取和分离膜蛋白。依靠它出色的灵敏度和稳定性，SPRm200也能够测量纳米尺度的结合行为，可用于研究细菌或病毒与抗菌性药物的相互作用，以及发展纳米级颗粒药物递送的新方法。 
SPRm200把SPR技术和光学成像结合起来，能够把活细胞成像和对药物分子结合反应定位分布图像实时地表征出来。如图1所示，明视场聚光灯将生长于芯片表面的细胞照亮，在底部的照相机捕获活细胞的明视场。同时SPR光源沿共振角度投射光线到传感器芯片上，由SPRm200探测器捕捉反射光，并把在每一个像素点上的SPR响应信号记录下来构成SPR像图。 
凝集素- 糖蛋白相互作用 
基本的细胞和治疗过程通常开始于配体与膜蛋白的结合，并且膜蛋白在其天然状态中的结合活性研究对于理解它们的生物学功能至关重要。这里是研究糖蛋白（膜蛋白）和凝集素（配体）之间的特异性相互作用以及单个细胞膜上的受体的结合活性和空间分布的实例。 将神经瘤细胞SHEP1在芯片上的细胞室中被孵化，然后置于SPRM样品台上。将PBS缓冲液在25℃以300ul/min的流速加入细胞室。将凝集素，80ug/ml的小麦胚芽凝集素（WGA），注入细胞室，然后用PBS缓冲液冲洗。用不同的WGA浓度（5, 10, 40, 80, 100, 200ug/ml）重复对细胞的类似测量。使用50mM GlcNAc 溶液来再生细胞表面上的膜糖蛋白受体。 如下图2所示在每个像素处记录传感曲线图，通过平均细胞图像内的像素点，可以使用一级结合动力学理论（参见下文）导出每个细胞的结合动力学参数。这里的测量结果与以前发表的数据一致[4]。 
绘制nACHRs的结合行为 nAChR膜受体在神经传递和尼古丁成瘾中起关键作用。确定它们在细胞中分布的常规方法基于荧光标记的二次抗体，其不提供直接的动力学并且易于发生假阳性。SPRm200直接测量第一抗体与不含第二抗体的nAChR的结合。该过程更加简单，克服了使用被标记的第二级抗体所带来的缺陷。 
上图中，SH-EP1工程化细胞在细胞膜上表达α4β2受体，并结合初代抗体抗α4（右图）。通过SPR 像图所显示的nAChR 同其初代抗体结合的分布（粉红色），可以明显看出这是一个非均相的表面结合。用SH-EP1野生型细胞来作为对照， 传感曲线右下图A显示了两种类型的细胞对nAChR的反应具有显著差异。如传感图B中所示，从SH-EP1工程化细胞反应减去野生型细胞反应（主要出于体积折射率效应）给出nAChR与其第一抗体的结合动力学，kon =6×104/Ms，koff = 3×10-3/s 和KD=45nM。 
纳米颗粒检测
在纳米尺度上，由一个纳米颗粒所产生的SPR响应信号非常独特。就好像把一个小石子放在一个缓缓流动的浅溪中，水面上就会产生一个波纹图案（参考下图）。SPR光源按共振角度投射到传感器芯片上使其产生一个沿着金属膜表面传播的表面等离子体(SP)波，如图3所示。当一个纳米颗粒结合到芯片表面时，它便成为SP波的散射点，因而会在SPR像中产生波纹图案。其形状远远大于纳米颗粒的实际尺寸（100 倍以上）。这放大的波纹图案使得SPRm200能够检测到粒子尺度远小于其光学衍射的极限，通过对这个放大的波纹图案进行跟踪和测量，就能实现对分子在纳米尺度下的结合行为进行监测和研究。 
在SPR像中，这些波纹的产生以及其强度的变化为纳米颗粒和芯片表面或和溶液中其它分子的相互作用提供了非常丰富的信息[1，5]。 
活的大肠杆菌O157:H7 在LB肉汤培养基中通过抗体偶联被系在传感器芯片上。他们因散射芯片中的SP波而在SPR像上产生许多点波纹如下图右边所示。 
虽然明视场的细菌细胞像（小黑点）稳定，SPR像中的点波纹强度有着显著的变化。通过监测这些波纹在纳米尺度下的强度波动，可为我们提供细菌细胞的新陈代谢的重要信息。当将500μg/mL的杀菌性抗生素多粘菌素B（PMB）加入细胞室时，细菌细胞的波动急剧减弱（下右图），从而表征细菌的死亡。 
系统规格表
系统规格表
传感器和耗材
金传感器晶片 
参考文献 K Syal, R Iriya, Y Yang, H Yu, S Wang, S Haydel, HY Chen, NJ Tao, "Antimicrobial Susceptibility Test with Plasmonic Imaging and Tracking of Single Bacterial Motions on Nanometer Scale", ACS Nano, 10, 845-852, 2016 F Zhang, S Wang, L Yin, Y Yang, Y Guan, W Wang, H Xu, NJ Tao, “Quantification of Epidermal Growth Factor Receptor Expression Level and Binding Kinetics on Cell Surfaces by Surface Plasmon Resonance Imaging", Analytical Chemistry, 87(19), 9960-9965, 2015 W Wang, L Yin, L G-M, S Wang, X Yu, S Eaton, S Zhang, H Chen, J LaBaer, NJ Tao, “In situ drug-receptor binding kinetics in single cells: a quantitative label- free study of anti-tumor drug resistance”, Scientific reports, 4, 1-7, 2014 W Wang, Y Yang, S Wang, V Nagaraj, Q Liu, J Wu and NJ Tao, "Label-free measuring and mapping of binding kinetics of membrane proteins in single living cells", Nature Chemistry, 4, 846-853, 2012 Wang, Shaopeng, et al. "Label-free imaging, detection, and mass measurement of single viruses by surface plasmon resonance." Proceedings of the National Academy of Sciences 107.37 (2010): 16028-16032.
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